2026年6月
この中の VETgirl オンライン獣医学継続教育 blog, アマンダ・M・シェルビー RVT、VTS(麻酔・鎮痛)では、獣医麻酔における気管内チューブ(ETT)カフの適切な膨張方法について解説します。犬、猫、馬において、気管損傷や過膨張のリスクを回避するために、特殊なカフシリンジなどのエビデンスに基づいた方法を用いて、患者の気道を保護し、麻酔管理を最適化する方法を学びましょう。
気管内チューブのカフを膨らませてリスクを最小限に抑え、効果を最大限に引き出す方法
By アマンダ・M・シェルビー、RVT、VTS(麻酔および鎮痛)、VETgirl シニア CE スペシャリスト
気管挿管後に気道確保を行う際、気管内チューブ(ETT)のカフを膨らませることはルーチンで行われる手順です。驚くべきことに、獣医療従事者の47.1~54%は、犬、猫、家畜、馬のETTカフの膨らませ方を教わった方法に基づいて行っていると回答しており、査読済みの文献に基づいてETTカフを膨らませる方法を採用しているのはわずか13.3~5.5%に過ぎません。1 さらに驚くべきことに、犬の場合、カフの不適切な膨張は86%にも及ぶ。2 気道確保のためのこの一見小さなステップは、非常に重要なのです!今回のVETgirlブログでは、獣医療における気管内チューブ(ETT)カフの膨張方法と、膨張しすぎたり、膨張が不十分だった場合に何が起こるのかを探っていきます!
マーフィー式またはマギル式の高容量低圧(HVLP)カフ付き気管チューブは、伴侶動物において最も一般的に使用されている気管チューブです(図1a参照)。これらは、気管壁のより広い表面積にカフ圧を分散させ、シールを形成するように設計されています。低容量高圧カフ付き気管チューブ(図1b参照)と比較すると、最新のHVLP気管チューブは、LVHP気管チューブよりも低い膨張圧でシールを形成することができます。3 さらに、気管の炎症や合併症の発生率が低いという利点もありますが、不適切に過膨張させた場合は気管損傷の可能性があります。4-6
どの気管チューブ(ETT)を使用する場合でも、カフの適切な膨張に注意を払い、ETTカフを使用する理由を十分に理解することが重要です。適切に膨張させたETTカフによって形成される密閉性により、麻酔廃ガス(WAG)への曝露と環境汚染が軽減され、酸素と吸入麻酔薬の供給が確保され、肺誤嚥のリスクが軽減され、換気が促進され、カプノグラフィーによる換気のモニタリングが改善されます。しかし、ETTカフの過膨張は、気管刺激、気管粘膜壁の虚血、気管裂傷とそれに伴う肺気腫、気管狭窄、さらには気管チューブ自体の潰れによる気道抵抗の増加または閉塞を引き起こす可能性があります。5-9 猫や犬において気管壁の血流が阻害される正確な気管内チューブカフ膨張圧は不明ですが、一般的には人間のガイドラインである20~30cmH2Oに従います。2Oを「安全」とみなす。10 カフの加圧圧力は、気管壁にかかる圧力と必ずしも一致するとは限りません。気管チューブの材質やサイズによって圧力の分布が異なり、低血圧の患者では、さらに低いカフ圧でも血流が阻害される可能性があります(ああ、物理学って本当に複雑ですね!)。
気管内チューブのカフはいつ膨らませるべきですか?
ETTカフを膨らませるタイミングは、大きく分けて3つあります。
(1)チューブの洗浄中(ETTを再使用する場合―ETTの洗浄および/または再利用に関するベストプラクティスについては、こちらのVETgirlブログをご覧ください) Pr_media)
(2)使用前に漏れや破れがないことを確認し、
(3)患者の経口気管挿管後。
気管内チューブ(ETT)カフの膨張に最適な方法は何ですか?
朗報です。複数の研究者が、気管内チューブ(ETT)カフの膨張方法について様々な比較検討を行いました。一般的に、小型の伴侶動物では、最大吸気圧(PIP)は20~30cmHです。2一方、大型動物種では、より高いPIPを必要とするさまざまな換気戦略が必要な場合、これらの気道内圧を超えることがあります。1 つまり、当社の気管内チューブカフは、PIP(気管内圧上昇点)まで密閉し、かつ体液の誤嚥を防ぐのに十分な性能を備えていればよいのです。
獣医学における哺乳類の気管内チューブ(ETT)カフ膨張に関して、一般的に研究されている方法をいくつか紹介します。
カフバルーン触診:
この主観的な方法は、おそらく低容量・低圧の気管内チューブの使用から引き継がれたもので(上の図1bを参照)、抵抗感や硬さが感じられるまでETTカフのパイロットバルーンを膨らませるというものです。複数の研究者が、ETTカフバルーンの触診によってカフ内圧が高くなることが多いことを実証しています。11-12
図2.気管内チューブカフバルーンの触診(動画提供:アマンダ・M・シェルビー)
最小閉塞容量(MOV)(図3参照):
この方法は、通常の注射器で気管内チューブのカフに空気を充填しながら、手動で最大吸気圧(通常20~30cmH)まで息を吹き込むというものです。2O) 気管内チューブの漏れを聴診または触診しながら確認する。獣医療従事者の気管内チューブカフ膨張方法を調査した研究では、この方法が最も一般的であった。8 しかし、その人気に関わらず、この方法は、専用のカフ膨張用シリンジを使用する場合と比較して、最適なカフ膨張圧を達成する上で効果的であることが示されている。2、12
図3.MOV法による気管内チューブカフの膨張(動画提供:アマンダ・M・シェルビー)
低抵抗シリンジ(例:ペリフィックス)による抵抗消失(LOR)® LOR 10 ml(B-Braunまたは同等品)(図4参照):
この方法では、麻酔医が最初に気管内チューブのカフを過剰に膨らませ、その後、抵抗の低い注射器のプランジャーを使って、圧力平衡が確立されるまでカフから余分な空気を自然に排出させる必要がある。
図4.非特殊注射器を用いた抵抗消失法による気管内チューブカフの膨張(動画提供:アマンダ・M・シェルビー)
特殊カフ膨張用シリンジ(図5および図6参照):
この方法は、市販の注射器または装置を使用し、カフの圧力を測定したり、「適切な」シール状態を示すのに十分な圧力がカフに達したことを知らせたりするものです。いくつかのブランドが検証され、ヒトへの使用についてFDAの承認を受けています(TruCuff)。TM [麻酔機器供給会社(AES)]とAGカフィル® [メドライン・インダストリーズ社]
カプノグラムの観察:
カプノグラムを用いてリークの有無を評価する人もいます。麻酔器と患者の呼吸回路にリークがない場合、麻酔導入と患者の挿管後にリークが発生する可能性が最も高いのは気管内チューブ(ETT)です。これは、カプノグラムの吸気部分の傾きの減少として現れます(図7参照)。Veenとde Grauwは、この方法が馬のETTカフ膨張に最適な方法であることを発見しました。1 しかし、この研究は現状の診療慣行に関する調査であり、気管内チューブのカフ圧データは提供していなかった。
文学は私たちに何を教えてくれるのか?
2つの研究結果を図8にまとめた。2、12

図8:さまざまなカフ膨張方法が、ETTカフの目標膨張、過小膨張、または過剰膨張を正確に反映する能力の発生率(パーセント(%)で表したもの)。*ネコ気道シミュレーターを使用。12 †クライアント所有の犬2
これらの研究により、特殊なカフシリンジは、20~30 cmH2O の範囲で最も信頼性の高い、目標とするカフ内膨張圧を生成することがわかった。2犬におけるOと、猫の気道シミュレーターを使用した研究。2、12
大型動物の場合はどうでしょうか?
これらの患者においても、ETTカフの膨張は同様に重要です。反芻動物は麻酔中に大量の唾液を分泌するため、おそらくそれ以上に重要です。馬や牛などの大型動物の場合、麻酔導入後すぐに人工呼吸器を装着することが多く、従来のMOV法によるETTカフの膨張が妨げられることがあります。しかし、落胆しないでください。追加の触診法として、馬の場合は患者の「喉のラッチ」の腹側に、大型反芻動物の場合はそれに相当する部位に手を当てて、陽圧呼吸中にリークを「感じる」方法があります。この部位に聴診器を当ててリーク音を聞く人もいます。振動を感じたり聞いたりすれば、リークがあります。振動がなければリークはありません。さて、この触診法ではカフを過剰に膨らませたり、逆に膨らませ不足にしたりする可能性があり、市販のカフ膨張装置を使用する方が優れているかもしれないが、今のところ誰もこの研究を行っていない(研究者の皆さん、ご検討ください!)。トゥゾー=ジュールド ら ETTカフ圧が80~120cmHまで上昇したことが判明した。2馬の酸素は、30~40 cmHのPIPでの陽圧換気中に気道を効果的に密閉するために必要であった。20.7 さらに、これらの研究者らは、これらのカフ圧では、すべてのETTカフが導入した液体の誤嚥から気道を保護するものの、気管粘膜の肉眼的および組織学的検査では、充血、点状出血または血腫、上皮および粘膜下層の損傷が発生したと結論付けた。7 ヒース ら 気管チューブのカフ圧が20cmH20Oという低い値でも、馬の気管に損傷が生じることがわかった。9
大型動物における気管内チューブ(ETT)カフの膨張方法として、私が実際に観察し、指導した経験のあるもう一つの一般的な方法は、30~60mLのシリンジで抵抗を感じるまでカフを膨張させるというものです。しかし、この方法もETTカフを過剰な圧力まで膨張させ、気管粘膜の損傷を引き起こす可能性があります。
なぜ私たちは哺乳類以外の種について語らなかったのか?
VETgirlでは、すべての生き物が大切だと考えています。しかし、哺乳類以外の動物種では、カフなしの気管内チューブ(コール型気管内チューブ)を使用することがよくあります。これは特に、気管輪が完全な動物種(鳥類や爬虫類など)に当てはまります。また、小児や気管の炎症や外傷を起こしやすい小型哺乳類では、カフなしのチューブを使用することもあります。
VETgirlの主なポイント:
・現在、獣医学分野における最適なカフ膨張方法や最適な圧力に関する、エビデンスに基づいた獣医学特有のコンセンサスガイドラインは存在しません。しかし、ETTカフ膨張方法を比較した研究の中で、ETTカフ膨張専用に製造されたデジタルシリンジは、目標とするETTカフ圧力に対して最も高い精度を提供します。
・獣医療の現場では、気管内チューブのカフをチェックするために圧力計が使用されることは稀である。
・気管内チューブのカフは、最適なカフ圧を維持するために、頻繁に再確認、膨張、または収縮が必要になる場合があります。
・大容量・低圧の気管内チューブの使用が推奨されますが、過膨張は気管の刺激や損傷を引き起こす可能性があります。
略語:
ETT 気管内チューブ
HVLP(高容量低圧)
LOR 抵抗力喪失
MOV最小閉塞量
PIP ピーク吸気圧
WAG 麻酔廃ガス
参照:
1. Veen I & de Grauw JC. 獣医学における気管内チューブカフの膨張と圧力確認に使用される方法:現在の診療に関するアンケート。 動物(バーゼル)。 2022、12(22):3076。
2. Hung WC、Ko JC、Weil ABら。犬における気管内チューブカフ圧の評価と3種類のカフ膨張シリンジ装置の使用。 フロント獣医科学。 2020; 7:39。
3. ドーシュ JA、ドーシュ SE。麻酔器具について理解する。第5版フィラデルフィア:リッピンコット・ウィリアムズ&ウィルキンス。 2008 年、第 19 章、p. 583.
4. Young PJ、Pakeerathan S、Blunt MCら。低容量・低圧気管チューブカフは肺誤嚥を軽減する。 クリットケアメッド。 2006;34(3):632-9.
5. Loeser EA、Hodges M、Gliedman J 他。低圧および高圧気管内チューブカフを用いた短期挿管後の気管病理。 麻酔と鎮痛. 1978;57(5):577-579.
6. Seegobin RD、van Hasselt GL。気管内カフ圧と気管粘膜血流:4つの大容量カフの影響に関する内視鏡的研究。 英国医学ジャーナル(臨床研究版)。 1984;288(6422):965-8.
7. Touzot-Jourde G、Stedman NL、Trim CM。馬における2種類の気管内チューブカフ膨張圧が液体の誤嚥および気管壁損傷に及ぼす影響。 獣医アナエスト アナルグ。 2005; 32:23–29。
8. Veen I、de Grauw JC。小型ウマにおけるカフの過膨張またはカフヘルニアによる気管内チューブ閉塞:症例シリーズ。 馬の獣医学教育。 2023;35(7):358-64.
9. Heath RB、Steffey EP、Thurmon JC、Wertz EM、Meagher DM、Hyyppa T、Van Slyke GL。馬における通常の経口気管挿管後の喉頭気管病変。 馬獣医学ジャーナル。 1989;21(6):434-7.
10. Bird AR、Bird DJ、McMillan MW。ネコにおける生体内気管内チューブ内圧の側面。 獣医麻酔鎮痛 2019;46(1):55-63.
11. Briganti A、Portela DA、Barsotti G、他。犬における4つの異なる膨張方法による気管内チューブカフ圧の評価。 獣医麻酔鎮痛 2012;39(5):488-94.
12. White DM、Makara M、Martinez-Taboada F. ネコ気道シミュレーターを用いた気管内チューブカフ圧に対する4つの膨張技術の比較。 J Feline Med Surg. 2020;22(7):641-647.
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気管内チューブのカフを膨らませるさまざまな方法について読むのは興味深いものでした。中には今まで聞いたこともなかった方法もありました!
非常に役立ちます!