Oktober 2024

In dieser Berufsbildungsmädchen Online Veterinär-Weiterbildung blogWir überprüfen die Wichtigkeit der Reinigung, Sterilisation und ordnungsgemäßen Lagerung von Endotrachealtuben (ETT) zwischen den Patienteneinsätzen. In der Veterinärmedizin wird häufig darüber diskutiert, wie wir unsere ETTs reinigen sollten. Sollten sie wie in der Humanmedizin nur einmal verwendet werden? (Aus Kostengründen im Veterinärbereich nicht üblich). Gibt es einen etablierten Standard für die ETT-Wartung in der Veterinärmedizin?

Das Akkreditierungsstandards der American Animal Hospital Association erfordern, dass:

„Endotrachealtuben sind steril oder vor der Verwendung gründlich gereinigt und mit einer nicht reizenden Lösung desinfiziert.

Endotrachealtuben sind Einwegtuben und werden nach jedem Gebrauch autoklaviert oder gassterilisiert.

Endotrachealtuben werden getrocknet und vor der Verwendung so gelagert, dass eine Kontamination verhindert wird. (d. h. ein offenes Gestell in der Nähe eines Zahnbereichs ist nicht zulässig; eine saubere, trockene Schublade oder ein geschlossener Behälter in der Nähe des Induktionsbereichs ist jedoch zulässig.)“1

Die Schlussfolgerung lautet, dass ETT ein Vektor für die Übertragung von Krankheitserregern von Patient zu Patient oder von der Umgebung auf den Patienten sein kann. ETT wurden als einer der Zielvektoren für im Krankenhaus erworbene oder nosokomiale Infektionen identifiziert.2 Daher ist die Erstellung eines gründlichen Reinigungs- und Lagerungsplans für wiederverwendete ETTs zur Aufrechterhaltung bewährter Verfahren von entscheidender Bedeutung.

Obwohl es in der veterinärmedizinischen Literatur keine etablierten, evidenzbasierten Reinigungsprotokolle für die ETT-Dekontamination zwischen Patienten gibt, wurden vergleichende Studien zu Reinigungsmethoden durchgeführt. Die wohl gängigste ETT-Desinfektionsmethode in veterinärmedizinischen Einrichtungen umfasst die Verwendung eines verdünnten Chlorhexidinbads. Marquis et al vier Reinigungspraktiken verglichen:

(1) ein einstündiges Bad in 1%iger Chlorhexidin-Verdünnung (0.04%ige Nolvasan-Lösung); beachten Sie, dass dies die niedrigste wirksame Konzentration des Herstellers ist, mit lauwarmem Leitungswasser

(2) lauwarmes Leitungswasser mit 1 Teelöffel flüssigem Geschirrspülmittel

(3) lauwarmes Leitungswasser ohne Reinigungs- oder Desinfektionsmittel

(4) eine 1-stündige, 300-ppm-Bleichlösung in lauwarmem Leitungswasser

Überraschenderweise und vielleicht alarmierend stellten sie fest, dass alle vier Protokolle immer noch ein signifikantes Bakterienwachstum in der Kultur erzeugten, wobei kein Protokoll hinsichtlich der verbesserten Sterilisation der ETT-Röhrchen wesentlich besser war als das andere!3 Diese Erkenntnisse legen für uns in der Veterinärmedizin (wo wir ETT-Röhrchen eher zwischen Patienten wiederverwenden) vielleicht nahe, dass wir über die traditionellen Seifen-, Einweich- und Schrubbtechniken hinausgehen und eine Sterilisationstechnik mit Glutaraldehyd oder Ethylenoxid (ETO) zwischen den Patienten in Betracht ziehen sollten.4

Bevor ETTs einem Sterilisationsprozess mit Glutaraldehyd oder ETO unterzogen werden, müssen sie natürlich zunächst von organischen Rückständen befreit werden. Ein Sterilisationsprozess mit Glutaraldehyd mag verlockend klingen, da er ein breites Wirkungsspektrum gegen Bakterien, Pilze und Viren aufweist (aber insbesondere nicht gegen Kokzidien und Prionen).2 Es handelt sich um eine häufig bei Endoskopiegeräten verwendete Desinfektionslösung, die jedoch die Schleimhäute, einschließlich der Atemwege, ätzt.5 Nach der Sterilisation mit Glutaraldehyd müssen Endotrachealtuben vor der Verwendung gründlich gespült und getrocknet werden. Alternativ wird ETO bei der Gassterilisationstechnik verwendet und ist wirksam bei der Inaktivierung von allem, was DNA und RNA enthält. Daher wird es sehr bevorzugt zur Sterilisation medizinischer Geräte eingesetzt, ohne diese zu beschädigen. Der Nachteil der ETO-Sterilisation ist der Bedarf an Spezialgeräten, Belüftung und Kosten. Weitere Überlegungen bei der ETO-Sterilisation sind, dass die Umschlagszeit für mit ETO sterilisierte Geräte oft 24 Stunden beträgt und ETTs vor der ETO-Sterilisation zunächst frei von organischen und anorganischen Rückständen und vollständig trocken sein müssen.

Reinigung und Sterilisation der ETTs sind nicht unsere einzigen Bedenken bei wiederholter Verwendung. Zwischen den Anwendungen kann die Integrität der ETT-Manschette beschädigt werden und sollte daher vor jeder Verwendung bestätigt werden. Nach dem Aufblasen sollte die Manschette aufgeblasen bleiben. Wenn die Manschette mit der Zeit oder unter Druck langsam Luft verliert, sollte das ETT entsorgt werden, da die Integrität der Manschette beeinträchtigt ist, was dazu führen könnte, dass die Atemwege während der Verwendung nicht mehr ausreichend geschützt sind. Schließlich muss die Lagerung zwischen den Anwendungen berücksichtigt werden. Nach der Sterilisation und Trocknung sollten ETTs in einem geschlossenen Schrank oder einer Schublade aufbewahrt werden, geschützt vor Staub und Kontaminationsgefahr (siehe Abbildung 1).

Abbildung 1. Geschlossener Schrank zur Aufbewahrung von Endotrachealtuben. Foto mit freundlicher Genehmigung von Chris Ralphs, DACVS Ocean State Veterinary Specialists

Sowohl PVC- als auch Silikon-ETTs sind heute die am häufigsten in der Veterinärmedizin verwendeten ETT-Typen. Aufgrund des Risikos einer Kontamination zwischen Patienten und zwischen Patienten sowie der Umgebung und dem Patienten sowie der Gefahr einer Beschädigung der ETT-Manschetten empfehlen Hersteller in den meisten Fällen, ETTs nur bei einem einzigen Patienten zu verwenden. Und obwohl uns noch keine soliden Studien vorliegen, um das Risiko einer Übertragung von Infektionen auf Patienten durch die Wiederverwendung von ETTs besser zu verstehen, können diese ETTs bei ordnungsgemäßer Reinigung und Lagerung mehrfach in der Veterinärmedizin verwendet werden.

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Referenzen: (Die Referenzliste bleibt in der wissenschaftlichen Zitierweise erhalten)

  1. American Animal Hospital Association. Akkreditierungsstandards der AAHA. Aktualisiert am 15. https://www.aaha.org/resources/aaha-standards/traditional-standards/
  2. Stull JW, Bjorvik E, Bub J, et al. AAHA-Richtlinien zur Infektionskontrolle, Prävention und Biosicherheit 2018. J Am Anim Hosp Assoc. 2018 Nov/Dez;54(6):297-326. doi: 10.5326/JAAHA-MS-6903. PMID: 30376377.
  3. Marquis CR, Gull T, Dodam J, et al. Vergleich von vier Reinigungsprotokollen für Endotrachealtuben bei anästhesierten Hunden. J Am Vet Med Assoc. 2023 2. Jan.;261(3):336-341. doi: 10.2460/javma.22.10.0446. PMID: 36595367.
  4. Yoon SZ, Jeon YS, Kim YC, et al. Die Sicherheit wiederverwendeter Endotrachealtuben, die gemäß den Richtlinien der Centers for Disease Control and Prevention sterilisiert wurden. J Clin Anesth. 2007 Aug;19(5):360-4. doi: 10.1016/j.jclinane.2007.02.009. PMID: 17869987.
  5. Sykes JE, Weese JS. Infektionskontrollprogramme für Hunde und Katzen. Infektionskrankheiten bei Hunden und Katzen. 2014:105–18. doi: 10.1016/B978-1-4377-0795-3.00011-9. Epub 2013, 26. August. PMCID: PMC7152206.

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